凯氏定氮仪微量蛋白检测实验操作步骤

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凯氏定氮仪微量蛋白检测实验操作步骤可以分成消化 蒸馏 滴定三大步骤。

第一步：消化

将预先称量好的固体硫酸钾/硫酸铜催化剂粉末约6g（可适当加量）小心加入洗净干燥的消化管底部；分别将样品1、2和空白对照（约2mL）各两份用分析天平差减法直接倒入消化管底部，记录各组重量；用量筒小心称取浓硫酸16mL加入各消化管底部。将消化管放在管架上，放入消化炉，启动通风橱。设置消化温度时间曲线：170℃（根据样品碳化和沸腾的情况，可适当提高或降低预消化温度，并尽量避免样品碳化沸腾挂壁以提高检测准确度），30min——250℃，10min——370℃（为保证消化效果，可根据情况适当提高至400℃以上），120min。当消化管内出现稳定的恒沸白色酸雾并回流时，可盖上消化管盖以减少硫酸损失。当样品被消化为明亮的蓝绿色或绿色液体时，即可停止消化，待其冷却至室温后，取出蒸馏，关闭通风橱。

第二步：蒸馏

向凯氏定氮仪的三个储液桶中分别加入足量的35%NaOH、2%H3BO3和蒸馏水（根据处理样品量，至少1L），旋紧储液桶盖子。开机，打开循环水，不放入样品，预蒸馏2min。向样品管中小心加入20mL蒸馏水以稀释硫酸，待其变为明亮的蓝色溶液时，小心放入蒸馏架，卡紧卡槽时注意将消化样品管口卡紧以防止氨蒸气流失；向500mL接收三角瓶中加入少量（约0.6mL）混合指示剂，并设定加硼酸12s，加碱8s，蒸馏8—9min，保存设置后启动仪器。当氨蒸气随冷凝水流出时（注意氨蒸气管出口浸没于接收三角瓶的硼酸溶液中），接收瓶中的硼酸溶液会由玫红色变为蓝色，待蒸馏完毕，用蒸馏水将氨蒸气管出口的残液冲洗入接收瓶后取出待测。将样品管取出，小心倒入水槽，并及时清洗。放入下一个样品管和接收瓶，重复以上操作。蒸馏完毕后，关闭循环水。待蒸馏水冷却后放出。如短时间内不再使用定氮仪，应用蒸馏水替换酸液和碱液，重复加酸加碱过程以清洗酸碱管路，维护设备。

第三步：滴定

用0.1NNaOH、0.1NHCl、蒸馏水分别润洗酸式滴定管各三次，最后用0.01037N滴定用标准HCl润洗两三次。加入0.01037N滴定用标准HCl，并小心放液至0刻度。开始滴定，左手控制滴定速度，右手不断摇动混匀三角瓶中溶液。（可预先对样品消耗盐酸量有一个大致的估计，即每毫升0.01N盐酸可滴定约0.14mg氮）临近滴定终点时溶液开始由蓝色变为蓝灰色，在最后一滴或半滴时微微呈现紫红色。视线与滴定管水平时读取并记录盐酸消耗量。用0.01037N滴定用标准HCl补满至0刻度后，可滴定下一个样品。

以标准硫酸铵检测的蒸馏回收效果，实验结果表明：当氮含量为1mg时，以1500W蒸馏器蒸馏8min，平均氮回收率为96.9%；以1500W蒸馏器蒸馏9min，平均氮回收率可达100%，蒸馏回收效果理想。建议对于低蛋白含量样品测量而言，降低蒸馏器功率，并适当延长蒸馏时间可进一步改善回收率，从而使结果重复性更好。

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